RNA Premium Kitの『DNase I の反応条件の調製』について質問です。 プロトコルでは、サンプル数に応じた分量の10ｘDNase I reaction bufferとDNase Iを 順番にそれぞれ添加するようにと記載がありますが、 あらかじめ、これらの試薬を別のチューブでミックスしてから添加することは可能でしょうか？ （調製方法の具体案） 　　10x DNase I reaction buffer（1サンプルあたり5 uL）とDNase I（1サンプルあたり1 uL）を 　　別のチューブで混合してから、1サンプルあたり6 uLずつ添加する

具体案での調製方法は、原理上、可能です。
ただし、恐れ入りますが、下記の点にご注意いただいて、ご実施をお願いいたします。

一般的に、あらかじめ別チューブでミックスする際は、デットボリュームを考慮して
少し余分に溶液を調製する必要があります。
そのため、キットの使用反応分に対して、これらの試薬が不足するリスクが出てまいります。

（例）
　　50 preps用のキットでは、DNase Iは55 uLのDNaseⅠ懸濁溶液で凍結乾燥した酵素を溶解するため、
　　キットの必要量50 uL（＝1uLｘ50 preps）に対して、余剰は5 uL（5サンプル分）のみとなります。
　　5サンプルのRNA抽出を具体案の調製方法を用いて実施する場合、下記の液量での調製になるかと存じます。

　　　10x DNase I reaction buffer　　30 uL（＝5 uL x （5+1）サンプル）
　　　DNase I　　　　　　　　　　　6 uL（＝1 uL x （5+1）サンプル）

　　この場合、デッドボリュームを考慮するため、これらの試薬の6サンプル分を使用することになります。
　　これを繰り返しますと、
　　45サンプル（＝5サンプルx 9回）に対する実際の試薬使用量が54 uL（＝6サンプルx 9回）となり、
　　結果として、50 preps用のキットにも関わらず、45サンプルのRNA抽出しか実施できないことがございます。

上記の具体案での調製方法でご実施いただきまして、もしも例のように、これらの試薬が不足した場合は、
追加でDNase I Set（別売オプション）のご購入をお勧めいたします。